- Krajowe Centrum Roślinnych Zasobów Genowych
- Samodzielna Pracownia Biologii Stosowanej
- Samodzielna Pracownia Oceny Jakości Produktów Roślinnych
- Zakład Biochemii i Fizjologii Roślin
- Zakład Biotechnologii i Cytogenetyki Roślin
- Zakład Fitopatologii
- Zakład Genetyki i Hodowli Roślin
- Zakład Genomiki Funkcjonalnej
- Zakład Inżynierii Genetycznej
- Zakład Nasiennictwa i Nasionoznawstwa
- Zakład Traw, Roślin Motylkowatych i Energetycznych
- Dział Badań
- Jednostki Funkcjonalne i Usługowe
- Oddziały i zamiejscowe Zakłady Naukowe
- Zakłady Doświadczalne Hodowli i Aklimatyzacji Roślin
- Spółki Hodowli Roślin
- Aktualności
- Konferencje i seminaria
- Działalność naukowa
- Dotacja Celowa MRiRW na rok 2021
- Postęp biologiczny 2020
- Szkoła Doktorska
- Projekty międzynarodowe
- Projekty LIDER
- Projekty krajowe
- Rolnictwo ekologiczne
- Laboratorium Usług Badawczych
- Instytucje współpracujące
- Oferta Szkoleniowa IHAR-PIB
- Przetargi
- Praca i Praktyki w IHAR-PIB
- Nagrody i wyróżnienia
- Krajowe Centrum Roślinnych Zasobów Genowych
- Bank informacji o sprzedaży sadzeniaków ziemniaka
- Rezerwacja noclegów
- Polityka Prywatności
- Polityka prywatności - RODO
Strona główna > Struktura organizacyjna > Zakład Fitopatologii
Zakład Fitopatologii
prof. dr hab. Edward Arseniuk - kierownik zakładu
tel.: 22 733 46 30
e-mail: e.arseniuk@ihar.edu.pl
Pracownie Hodowli Odpornościowej (więcej...)
prof. dr hab. Edward Arseniuk
tel.: 22 733 46 30
e-mail: e.arseniuk@ihar.edu.pl
Pracownia Chorób Roślin (więcej...)
dr Piotr Ochodzki
tel.: 22 733 46 37, kom.: 603 454 784
e-mail:p.ochodzki@ihar.edu.pl
Pracownia Organizmów Kwarantannowych (więcej...)
vacat
Pracownia Hodowli Odpornościowej
prof. dr hab. Edward Arseniuk
tel.: 22 733 46 30
e-mail: e.arseniuk@ihar.edu.pl
Zadania:
- wytwarzanie linii hodowlanych odpornych na główne choroby zbóż przy wykorzystaniu metod selekcji molekularnej i technik kultur in vitro,
- poszukiwanie nowych źródeł odporności i identyfikacja markerów molekularnych sprzężonych z odpornością pszenicy, pszenżyta i jęczmienia na patogeny bio- i nekrotroficzne,
- poszukiwanie markerów DNA powiązanych z typami kojarzeniowymi i patogenicznością Phaeosphaeria (Stagonospora, syn. Parastagonospora) nodorum i Mycosphaerella graminicola (Septoria tritici, syn. Zymoseptoria tritici),
- badania molekularne zmienności genetycznej w populacjach grzybów patogenicznych,
- monitorowanie, gromadzenie i charakterystyka patogeniczności populacji rdzy (Puccinia triticina and P. striiformis) i septoriozy zbóż (Parastagonospora nodorum i Zymoseptoria tritici).
![]() |
Zmienność morfotypów i reakcji na septoriozę liści i plew linii dihaploidalnych wyprodukowanych z pylników mieszańca ozimych odmian pszenżyta Pinokio × Bogo pokolenia F1. |
Pracownia Chorób Roślin
dr Piotr Ochodzki
tel.: 22 733 46 37, kom.: 603 454 784
e-mail:p.ochodzki@ihar.edu.pl
Zadania:
- wytwarzanie genotypów pszenicy, pszenżyta i pszenicy twardej o zwiększonej odporności na choroby powodowane przez Fusarium spp.,
- ocena materiałów hodowlanych i poszukiwanie źródeł odporności pszenżyta, pszenicy i pszenicy twardej na choroby powodowane przez Fusarium spp.,
- doskonalenie metodyki testowania odporności zbóż i kukurydzy na fuzariozę kłosów i fuzariozę kolb,
- ocena dzikich form spokrewnionych zbóż w celu określenia możliwości wykorzystania w hodowli odpornościowej,
- badanie roli mikotoksyn w patogenezie chorób zbóż powodowanych przez grzyby Fusarium spp.,
- analiza zmienności populacji grzybów Fusarium spp. na terenie Polski,
- charakterystyka uzyskiwanych izolatów Fusarium ssp. pod kątem produkcji mikotoksyn,
- zawartość wybranych mikotoksyn fuzaryjnych w ziarnie zbóż i w ziarnie kukurydzy,
- oznaczanie zawartości ergosterolu w materiale roślinnym,
- doskonalenie metod analizy mikotoksyn,
- ocena zawartości mikotoksyn wytwarzanych przez endofity traw,
- analiza zawartości alkaloidów sporyszu w ziarnie zbóż,
- charakterystyka toksyn białkowych wytwarzanych przez Stagonospora nodorum,
- jakościowa i ilościowa analiza zawartości cukrów prostych i polisacharydów w materiale roślinnym,
- badania nad uprawą kukurydzy i pszenżyta w warunkach rolnictwa ekologicznego.
Pracownia Organizmów Kwarantannowych
vacat
Zadania:
- Doskonalenie metodyki wykrywania i testowania odporności genotypów ziemniaka na Synchytrium endobioticum – sprawcy raka ziemniaka.
Uprawa odpornych na różne patotypy S. endobioticum odmian ziemniaka jest główną metodą zapobiegania rozprzestrzeniania się grzyba. W laboratorium wykonywane są doświadczenia mające na celu doskonalenie metodyki oceny odporności genotypów ziemniaka na S. endobioticum. W doświadczeniach używana jest metoda Glynne-Lemmerzahla, która jest zalecana w standardzie EPPO PM 7/28. Standard ten jest stosowany przypadku wykonywania oficjalnych testów odpornościowych. Dla odmian odpornych wydawane są certyfikaty odporności na określone patotypy grzyba.
![]() |
Inokulacja kiełków ziemniaka metodą Glynne-Lemmerzahla. |
![]() |
Reakcja podatnego genotypu ziemniaka na patotyp 1(D1) po 4 tyg. inkubacji. |
- Identyfikacja izolatów S. endobioticum
Poszczególne izolaty S. endobioticum mogą przełamywać określoną odporność gospodarza. Do dokładnego określenia profilu wirulencji poszczególnych izolatów S. endobioticum konieczne jest użycie odpowiednio dobranych odmian różnicujących ziemniaka. W pracowni wykonywane są testy patogeniczność izolatów S. endobioticum metodą Glynne-Lemmerzahla, zgodnie z Standardem EPPO PM 7/28. Testy są wykonywane na co najmniej 20 odmianach różnicujących, co pozwala na wykrycie mało znanych patotypów S. endobioticum.
![]() |
Odmienna reakcja odm. Asche Sämling na patotyp 3(M1) i 2(Ch1) S. endobioticum. |
- Gromadzenie i przechowywanie kolekcji patotypów i izolatów S. endobioticum
Pracownia posiada kolekcję najważniejszych w Europie patotypów S. endobioticum. Należą do nich następujące patotypy: 1(D1), 2(G1), 6(O1), 8(F1) i 18(T1). Utrzymywana jest również kolekcja polskich patotypów; 2(Ch1), 3(M1) oraz 39(P1). W pracowni utrzymywana jest kolekcja izolatów S. endobioticum z Wielkiej Brytanii, Szwecji, Bułgarii, Danii, Grecji a także z Polski. Kolekcja ta jest wykorzystywana do poszukiwania potencjalnych źródeł odporności w diploidalnym i tetraploidalnym ziemniaku. Poszczególne patotypy i izolaty mają regularnie sprawdzany profil wirulencji na odpowiednich odmianach różnicujących.
![]() |
Namnażanie narośli rakowych na bulwach podatnej odmiany. |
- Śledzenie zmian wirulencji patotypów w populacjach nicieni kwarantannowych z rodzaju Globodera na terenie Polski. Identyfikacja patotypów mątwika ziemniaczanego (G. rostochiensis) oraz mątwika agresywnego (G. pallida) w próbach gleby.
- Gromadzenie i przechowywanie kolekcji patotypów mątwika ziemniaczanego (G. rostochiensis) i agresywnego (G. pallida) w formie dojrzałych cyst.
- Badanie odporności materiałów hodowlanych i odmian ziemniaka na 5 patotypów mątwika ziemniaczanego (Ro1-Ro5) i 3 patotypy mątwika agresywnego (Pa1-Pa3).
- Badanie bulw ziemniaka, wody, ścieków i odpadów poprodukcyjnych przemysłu spożywczego na obecność bakterii Ralstonia solanacearum.
- Molekularne metody wykrywania oraz różnicowania szczepów bakterii Clavibacter michiganensis subsp. Sepedonicus - sprawcy bakteriozy pierścieniowej ziemniaka
Bakterioza pierścieniowa ziemniaka wywoływana przez bakterie Clavibacter michiganensis subsp. sepedonicus jest groźną chorobą kwarantannową ziemniaka zarówno w Polsce jak i na świecie. Stwarza ona ogromne zagrożenie dla produkcji i hodowli nasiennej oraz utrudnia krajowy obrót ziemniaka w Unii Europejskiej i poza Unią. W krajach UE obowiązują odpowiednie regulacje prawne, szczegółowo określające stosowanie procedur zwalczania i zapobiegania rozprzestrzenianiu bakteriozy pierścieniowej ziemniaka.
![]() |
Objawy bakteriozy pierścieniowej ziemniaka na bulwie. |